۵ اشتباه رایج در خونگیری و نمونه‌گیری

مقاله اصلی از: لین کلاریزیو، DVM، دانشگاه ایالتی کانزاس
لیزا ام. پولمن، DVM، MS، DACVP، دانشگاه ایالتی کانزاس


خطاها در جمع‌آوری خون در آزمایشگاه‌های تجاری و بالینی

مقدمه

خطاها در آزمایشگاه‌های دامپزشکی - چه در محیط‌های بالینی و چه در محیط‌های تجاری - را می‌توان به سه دسته تقسیم کرد:

  1. خطاهای پیش از آنالیز: این خطاها قبل از تجزیه و تحلیل واقعی رخ می‌دهند و با اشتباهات در جمع‌آوری و جابجایی نمونه مرتبط هستند. آن‌ها رایج‌ترین منبع خطا در آزمایشگاه‌های انسانی و دامپزشکی هستند.
  2. خطاهای تحلیلی: این موارد در طول آزمایش‌های آزمایشگاهی ایجاد می‌شوند و به عواملی مانند دقت، حساسیت و اختصاصی بودن تجهیزات یا روش‌های مورد استفاده مربوط می‌شوند.
  3. خطاهای پس از تجزیه و تحلیل: این خطاها پس از تجزیه و تحلیل رخ می‌دهند و اغلب به دلیل مستندات ناقص یا تفسیر نادرست نتایج هستند.

به گفته نویسندگان، پنج خطای زیر از جمله رایج‌ترین مشکلات پیش از آزمایش هستند که می‌توانند منجر به نتایج آزمایشگاهی نادرست شوند.


۱. بیمار غیر ناشتا ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

افزایش یافته سطح تری گلیسیرید, ، که است لیپمی لیپمی می‌تواند ناشی از عوامل پاتولوژیک یا مصرف غذا قبل از خونگیری باشد. در بیشتر موارد، این اتفاق به صورت ... رخ می‌دهد. تغییر پس از غذا در بیمارانی که ناشتا نیستند (به شکل‌های ۱ و ۲ مراجعه کنید).

لیپمی چگونه بر نتایج آزمایشگاهی تأثیر می‌گذارد؟

لیپمی افزایش می‌دهد کدورت سرم و پلاسما, ، که می‌تواند آزمایش‌هایی را که به پراکندگی نور متکی هستند، تحریف کند، به عنوان مثال:

  • سطح پروتئین کل (اندازه‌گیری شده توسط رفرکتومتری)
  • سطح هموگلوبین و شاخص‌های مرتبط
  • سطح بیلی روبین

همچنین ممکن است سطح لیپیدها به طور کاذب پایین باشد. سطح الکترولیت علت، به خصوص اگر نمونه آلوده باشد پتانسیومتری غیرمستقیم بسیاری از ابزارهای تحلیلی قبل از اندازه‌گیری، نمونه را رقیق می‌کنند که می‌تواند منجر به مشکلاتی در نمونه‌های لیپمیک شود. جابجایی حجمی این امر منجر به موارد زیر می‌شود: سطح بالای تری‌گلیسیرید، آب را جابجا می‌کند و در نتیجه غلظت اندازه‌گیری شده ... را افزایش می‌دهد. سدیم، پتاسیم و کلرید به طور کاذب پایین تر به نظر می رسد.

💡 راه حل: ساده‌ترین روش برای جلوگیری از خطاهای مرتبط با لیپمی، آموزش صاحبان حیوانات خانگی برای بررسی حیواناتشان است. قبل از خونگیری باید ۸ تا ۱۲ ساعت ناشتا بود..


۲. همولیز آزمایشگاهی ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

همولیز به تخریب گلبول‌های قرمز خون اشاره دارد که باعث می‌شود پلاسما یا سرم به ... تبدیل شود. تغییر رنگ صورتی به قرمز فرض می‌کند (شکل 3 را ببینید). همولیز می‌تواند یا پاتولوژیک (درون تنی) یا مربوط به مصنوعات (in vitro) ظاهر شوند.

علل همولیز آزمایشگاهی:

  • خونگیری تروماتیک به دلیل سوزن‌های خیلی کوچک یا مکش قوی با سرنگ
  • رسیدگی نامناسب مانند تکان دادن شدید نمونه
  • دماهای شدید (مثلاً خنک کردن مستقیم روی یخ یا گرما)
  • پردازش با تأخیر نمونه

پیامدهای همولیز:

  1. مقادیر نادرست هماتولوژی:
    • تعداد گلبول‌های قرمز خون به طور کاذب پایین است
    • مقادیر نادرست هماتوکریت
  2. تأثیر بر آزمایش‌های بیوشیمیایی:
    • هموگلوبین آزاد نور را جذب می‌کند و می‌تواند در آزمایش‌های آنزیمی مانند ... اختلال ایجاد کند. بیلی روبین، کراتین کیناز و کلسترول مزاحم شدن.
    • اجزای درون سلولی مانند پتاسیم،, قدیمی و AST آزاد می‌شوند و می‌توانند باعث خوانش‌های کاذب بالا شوند.

💡 راه حل:

  • نمونه‌گیری خون ملایم با سوزن‌های با سوراخ بزرگ (مثلاً. ۲۰ گرم برای سگ/گربه، ۱۸ گرم برای اسب/گاو)
  • از مکش قوی با سرنگ استفاده نکنید.
  • نمونه را در جای خنک، اما نه یخ زده، نگهداری کنید.
  • آنالیز سریع یا سانتریفیوژ قبلی
۵ اشتباه رایج ۳
5 اشتباه رایج در هنگام خونگیری 11

۳. نمونه منعقد شده ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

یکی نمونه خون لخته شده می‌تواند باشد زمان استخراج طولانی, سوراخ شدن تروماتیک یا اختلاط ناکافی با ضد انعقاد پدید آید.

چرا لخته‌های خون مشکل‌ساز هستند؟

  • می‌توان مسدود کردن تجهیزات آزمایشگاهی و منجر به تعمیرات پرهزینه شود
  • می‌تواند نادرست باشد تعداد پلاکت‌ها علت (شبه ترومبوسیتوپنی)
  • معیوب آزمایش‌های خون‌شناسی و انعقاد خون

💡 راه حل:

  • خونگیری سریع با کانولای مناسب
  • بلافاصله به آرامی مخلوط کنید (8-10 بار کج کنید، تکان ندهید!)
  • بازرسی بصری برای لخته‌ها قبل از تجزیه و تحلیل

۴. حجم نمونه ناکافی (نمونه خیلی کوچک است) ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

حجم خون ناکافی می‌تواند منجر به نتایج آزمایشگاهی نادرست این می‌تواند منجر به مشکلاتی شود زیرا نسبت ماده ضد انعقاد به خون مختل می‌شود.

مشکلات ناشی از نمونه ناکافی:

  • لوله‌های EDTA: EDTA هیپرتونیک آب را از گلبول‌های قرمز جذب می‌کند که منجر به نتایج نادرست می‌شود. مقادیر هماتوکریت ناشی شده است.
  • لوله‌های سیترات (آزمایش‌های انعقادی): نیاز به نسبت دقیقی از ۱:۹ (ضد انعقاد: خون).
  • لوله‌های سرم: اگر خون خیلی کم باشد، جداسازی سرم ممکن است برای همه آزمایش‌ها کافی نباشد.

💡 راه حل:

  • همیشه به نشانگر لوله را پر کنید
  • در اگر نمونه خون کوچک است، با آزمایشگاه تماس بگیرید.
۵ اشتباه رایج ۶
5 اشتباه رایج در هنگام خونگیری 14

۵. پردازش با تأخیر ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

اگر نمونه‌های خون به سرعت تجزیه و تحلیل نشوند، مورفولوژی سلول‌ها و ترکیب شیمیایی آن‌ها می‌تواند تغییر کند.

مشکلات ناشی از تأخیر در پردازش:

  • تورم گلبول‌های قرمز → مقادیر نادرست هماتوکریت
  • تجزیه گلوکز → سطح قند خون پایین کاذب
  • فعالیت آنزیم ادامه دارد → افزایش کاذب سطح آنزیم‌های کبدی (ALT، AST)
  • مایکوپلاسماها (انگل‌های خون) می‌توانند از گلبول‌های قرمز جدا شوند → تشخیص نادرست عفونت

💡 راه حل:

  • آزمایش خون را ظرف ۱۲ ساعت ارزیابی کنید
  • در صورت لزوم، سرم/پلاسما را جدا کرده و در دمای ۴ درجه سانتیگراد نگهداری کنید.

سوالات متداول در مورد ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

چرا مهم است که حیوان قبل از خونگیری ناشتا باشد؟

اگر حیوان روزه نگیرد، این امر می‌تواند به طور قابل توجهی بر مقادیر خون تأثیر بگذارد، به خصوص از طریق ... لیپمی - کدر شدن پلاسما به دلیل افزایش سطح چربی خون (تری گلیسیرید).
لیپمی چه تاثیری بر نتایج آزمایشگاهی دارد؟
خطاهای اندازه‌گیری الکترولیت: لیپیدها جایگزین آب در پلاسما می‌شوند و باعث می‌شوند غلظت الکترولیت‌ها (مثلاً سدیم، پتاسیم، کلرید) به طور کاذب پایین‌تر به نظر برسد.
سطح پروتئین و هموگلوبین مختل شده: روش‌های پراکندگی نور که برای اندازه‌گیری پروتئین کل یا هموگلوبین استفاده می‌شوند، می‌توانند توسط لیپمی مختل شوند.
اثرات بر عملکرد کبد: به طور خاص، آزمایش‌های بیلی‌روبین می‌توانند غیرقابل اعتماد شوند.
حیوان قبل از خونگیری چه مدت باید ناشتا باشد؟
سگ‌ها و گربه‌ها: ۸ تا ۱۲ ساعت
اسب‌ها: ۱۲ تا ۲۴ ساعت
نشخوارکنندگان (گاو، گوسفند، بز): ۴ تا ۱۲ ساعت, بسته به سرعت هضم
آیا استثنائاتی در مورد حکم روزه وجود دارد؟
بله! بعضی از حیوانات را نباید با شکم خالی نگه داشت، مثلاً:
حیوانات جوان، بیمار یا کم وزن, زیرا آنها بیشتر مستعد ابتلا به افت قند خون هستند.
حیوانات دیابتی, زیرا یک دوره طولانی ناشتا می‌تواند قند خون آنها را به شدت کاهش دهد.
بیماران اورژانسی, ، جایی که نتایج آزمایشگاهی فوری مورد نیاز است.
اگر نتوان از حیوان در حالت ناشتا خون گرفت، آزمایشگاه باید از وضعیت تغذیه‌ای حیوان مطلع شود تا نتایج آزمایش را به درستی تفسیر کند.

چگونه می‌توانم از همولیز در طول خونگیری جلوگیری کنم؟

همولیز, پارگی گلبول‌های قرمز خون یا ترکیدن گلبول‌های قرمز، نتایج آزمایشگاهی متعددی را مخدوش می‌کند. این اتفاق می‌تواند در حین جمع‌آوری خون یا از طریق جابجایی نادرست نمونه رخ دهد.
علل معمول همولیز:
خونگیری تروماتیک:استفاده از سوزن‌های خیلی کوچک یا اعمال مکش بیش از حد با سرنگ منجر به فشار منفی بالایی می‌شود که گلبول‌های قرمز را از بین می‌برد.
برخورد نامناسب:تکان دادن شدید یا پیپت کردن با سرعت بیش از حد می‌تواند به سلول‌ها آسیب مکانیکی وارد کند.
نوسانات دما:سرمای مستقیم (مثلاً نگهداری روی یخ) یا گرما (مثلاً نور خورشید) می‌تواند غشاهای سلولی را بی‌ثبات کند.
تأخیرهای طولانی در پردازش:اگر نمونه به موقع سانتریفیوژ نشود، گلبول‌های قرمز می‌توانند خود به خود تجزیه شوند.
اقدامات لازم برای جلوگیری از همولیز:
نمونه گیری خون ملایم: از یک سوزن به اندازه کافی بزرگ استفاده کنید (حداقل ۲۰ گرم برای سگ‌ها/گربه‌ها, ۱۸ گرم برای اسب/گاو).
از مکش بیش از حد با سرنگ خودداری کنید: اگر از سرنگ استفاده می‌کنید، پیستون را به آرامی به عقب بکشید.
انبارداری مناسب:
مستقیماً روی یخ خنک نکنید، بلکه در یخچال (۴ درجه سانتیگراد) نگهداری کنید.
بدون نور خورشید یا گرمای بیش از حد.
پردازش سریع: اگر تجزیه و تحلیل فوری امکان‌پذیر نیست، نمونه را سانتریفیوژ کرده و پلاسما/سرم را جدا کنید.

چرا نمونه خون باید کاملاً با ماده ضد انعقاد مخلوط شود؟

داروهای ضد انعقاد خون مانند EDTA، هپارین یا سیترات آنها از لخته شدن خون جلوگیری می‌کنند، اما تنها در صورتی مؤثر هستند که به درستی با نمونه مخلوط شوند.
اگر یک نمونه به اندازه کافی مخلوط نشود چه اتفاقی می‌افتد؟
تشکیل ریز لخته‌ها: می‌تواند منجر به کاهش کاذب تعداد پلاکت‌ها (پودوترومبوسیتوپنی) شود.
خطاهای اندازه‌گیری شمارش خون: لخته‌ها می‌توانند سلول‌ها را احاطه کنند و باعث شوند که شمارنده سلول، گلبول‌های قرمز و لکوسیت‌های کمتری را تشخیص دهد.
مسدود کردن تجهیزات آزمایشگاهی: کلوخه‌ها می‌توانند پیپت‌ها یا لوله‌های آنالیز را مسدود کرده و تعمیرات پرهزینه‌ای را به همراه داشته باشند.
چگونه یک نمونه را به درستی مخلوط کنیم؟
پس از حذف: لوله چندین بار (8-10 بار) به آرامی کج کنید., ، تکون نخور!
پیشگیری از انعقاد خون: بلافاصله پس از خونگیری، نمونه‌های خون‌شناسی را به آزمایشگاه بیاورید.
در صورت تاخیر در حمل و نقل: در یخچال نگهداری شود، اما فریز نشود.
اگر نمونه‌ای لخته شده باشد، می‌توان از آن برای بسیاری از تجزیه و تحلیل‌ها استفاده کرد. دیگر استفاده نمی‌شود سپس آزمایش خون مجدد لازم خواهد بود.

چرا نمونه خونی که خیلی کوچک است مشکل‌ساز است؟

یکی حجم نمونه ناکافی این امر می‌تواند منجر به نتایج آزمایشگاهی نادرست شود زیرا نسبت ضد انعقاد به خون نادرست است.
اگر خون خیلی کمی در لوله باشد چه اتفاقی می‌افتد؟
برای لوله‌های EDTA:ضد انعقاد هیپرتونیک است و آب را از سلول‌های خونی بیرون می‌کشد → مورفولوژی سلولی تغییر یافته و مقادیر نادرست هماتوکریت.
برای لوله‌های سیترات (آزمایش‌های انعقادی):نسبت ماده ضد انعقاد به خون مختل شده است → طولانی شدن نادرست زمان لخته شدن خون.
برای لوله‌های سرم:اگر سرم کافی به دست نیاید، آزمایش‌های خاصی را نمی‌توان انجام داد.
نکات لازم برای نمونه گیری صحیح خون:
از اندازه صحیح لوله استفاده کنید: همیشه تا علامت مشخص شده پر کنید.
اگر خون کمی در دسترس است: برای بررسی امکان انجام یک روش جایگزین، با آزمایشگاه تماس بگیرید.
مطمئن شوید که حیوان به خوبی آب دریافت می‌کند: حیواناتی که دچار کم آبی بدن می‌شوند، اغلب جریان خون ضعیفی دارند.

چرا پردازش سریع نمونه‌های خون مهم است؟

یکی پردازش با تأخیر این می‌تواند بسیاری از نتایج آزمایشگاهی را تحریف کند. دلیل این امر فعال ماندن سلول‌های خونی و آنزیم‌ها و ادامه واکنش‌های شیمیایی است.
چه مشکلاتی از تأخیر در پردازش ایجاد می‌شود؟
تغییرات سلولی:گلبول‌های قرمز خون می‌توانند متورم شوند، که منجر به مقادیر نادرست هماتوکریت و MCV منجر می شود.
تغییرات شبه‌سمی در نوتروفیل‌ها رخ می‌دهد که می‌تواند منجر به تشخیص اشتباه شود.
سوء تعبیرهای ناشی از تغییرات متابولیک:گلوکز همچنان تجزیه می‌شود → پایین بودن کاذب سطح قند خون.
آنزیم‌ها (مثلاً ALT، AST) می‌توانند فعال باقی بمانند → افزایش سطح آنزیم‌های کبدی بدون آسیب واقعی کبد.
انگل‌ها می‌توانند از بین بروند:مایکوپلاسماها در گربه‌ها از سطح سلول جدا می‌شوند و دیگر قابل شناسایی نیستند.
چگونه می‌توان از تأخیر در پردازش جلوگیری کرد؟
پردازش فوری یا ذخیره جداگانه سرم/پلاسما
آزمایش خون را ظرف ۱۲ ساعت، ترجیحاً بلافاصله، ارزیابی کنید.
اگر تأخیر اجتناب‌ناپذیر باشد: نمونه‌ها را در یخچال (۴ درجه سانتیگراد) نگهداری کنید یا سرم/پلاسما را فریز کنید.


خلاصه: ۵ اشتباه رایج در جمع‌آوری خون و تأثیر آنها بر نتایج آزمایشگاهی

Die ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری خطاهای قبل از آزمایش، به معنی خطاهایی که در حین جمع‌آوری یا جابجایی خون رخ می‌دهند، شایع‌ترین علت نتایج نادرست آزمایش هستند. این خلاصه در مورد ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری به طور مفصل توضیح داده شده است تا آگاهی دامپزشکان و کارکنان آزمایشگاه در مورد مشکلات احتمالی افزایش یابد و کیفیت نمونه‌های خون بهبود یابد.

۱. بیمار ناشتا - یکی از ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری

بیماری که روزه نمی‌گیرد می‌تواند دچار ... شود. لیپمی این می‌تواند منجر به خوانش‌های غیرطبیعی خون شود که خون را کدر می‌کند و بر چندین مقدار آزمایشگاهی تأثیر می‌گذارد. آزمایش‌های مبتنی بر پراکندگی نور، مانند آزمایش‌هایی که پروتئین کل، هموگلوبین و بیلی‌روبین را اندازه‌گیری می‌کنند، به ویژه تحت تأثیر قرار می‌گیرند. سطح الکترولیت‌ها نیز ممکن است به طور کاذب پایین‌تر به نظر برسد زیرا تری‌گلیسیریدها حجم پلاسما را تغییر می‌دهند. یکی از ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری بنابراین، عدم آموزش به صاحبان حیوانات برای حفظ امنیت آنها ... قبل از خونگیری باید ۸ تا ۱۲ ساعت ناشتا بود..

۲. همولیز آزمایشگاهی - یک نکته بحرانی در میان ۵ خطای رایج در خونگیری

همولیز زمانی رخ می‌دهد که گلبول‌های قرمز خون پاره شوند و می‌توانند باعث اختلال در سطح پتاسیم، کبد و آنزیم‌ها شوند. ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری این امر به ویژه مشکل‌ساز است زیرا مولکول‌های آزاد هموگلوبین می‌توانند نتایج آزمایش را تحریف کنند. علل همولیز شامل سوزن خیلی کوچک، مکش قوی با سرنگ، تکان دادن شدید نمونه یا اختلاف دما است. برای جلوگیری از این امر، ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری برای جلوگیری از این امر، خونگیری باید به آرامی و با استفاده از یک کانول مناسب انجام شود.

۳. نمونه لخته شده - یکی از ۵ خطای قابل اجتناب در جمع‌آوری خون

مخلوط کردن ناکافی با ضد انعقاد می‌تواند منجر به تشکیل لخته‌های خون شود که می‌تواند تجهیزات آزمایشگاهی را مسدود کند یا نتایج نادرستی ایجاد کند. این خطا به ویژه در لوله‌های EDTA یا سیترات رخ می‌دهد. ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری این شامل مخلوط کردن ناکافی نمونه پس از جمع‌آوری می‌شود. مخلوط کردن فوری و ملایم با لوله را ۸ تا ۱۰ بار کج کنید می‌تواند از این اشتباه اجتناب کند.

۴. حجم ناکافی نمونه - یکی از ۵ خطای رایج در جمع‌آوری خون که اغلب نادیده گرفته می‌شود

حجم ناکافی نمونه می‌تواند نتایج آزمایشگاهی را تحریف کند زیرا نسبت خون به ماده ضد انعقاد نادرست است. این امر منجر به آزمایش‌های انعقادی یا مقادیر هماتوکریت کاذب می‌شود. در میان ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری این یکی از رایج‌ترین اشتباهات قابل اجتناب است. نمونه‌های خون همیشه باید ... تا علامت روی لوله برای اطمینان از مقادیر صحیح، باید پر شود.

۵. تأخیر در پردازش - آخرین مورد، اما نه کم‌اهمیت‌تر، از ۵ خطای اصلی جمع‌آوری خون.

اگر نمونه خون بلافاصله پردازش نشود، سلول‌های خونی و اجزای شیمیایی می‌توانند تغییر کنند. آزمایش با تأخیر می‌تواند منجر به مقادیر کاذب هماتوکریت، سطح گلوکز پایین‌تر یا تغییر سطح آنزیم‌های کبدی شود. ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری این همچنین شامل تأخیر در پردازش نمونه می‌شود. برای جلوگیری از این خطا، نمونه‌های خون باید در اسرع وقت پردازش شوند. ظرف ۱۲ ساعت آنالیز شد یا در دمای 4 درجه سانتیگراد نگهداری شود.

نتیجه‌گیری: اجتناب از ۵ خطای رایج در خون‌گیری برای تشخیص‌های قابل اعتماد

Die ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری در صورت اطمینان از جمع‌آوری، جابجایی و پردازش صحیح نمونه، این خطرات قابل اجتناب هستند. بسیاری از این خطرات را می‌توان از طریق اقدامات ساده‌ای مانند ناشتا بودن بیمار، جمع‌آوری خون ملایم، مخلوط کردن صحیح با ضد انعقاد، حجم کافی نمونه و پردازش سریع، پیشگیری کرد. ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری این امر قابل پیشگیری است. دامپزشکان و کارکنان آزمایشگاه باید از این امر اجتناب کنند. ۵ اشتباه رایج هنگام خونگیری برای بهبود کیفیت تشخیص و اطمینان از مقادیر دقیق آزمایشگاهی، از این موضوع آگاه باشید.

منابع:

  1. استکهام اس ال، اسکات ام ای. مفاهیم مقدماتی. در: استکهام اس ال، اسکات ام ای. مبانی آسیب‌شناسی بالینی دامپزشکی. چاپ دوم. انتشارات بلک‌ول؛ ۲۰۰۸: ۳-۵۱. 
  2. هویجبرگ ای، لیدنگر ای، فریمن کی. سیستم مدیریت خطا در آزمایشگاه بالینی دامپزشکی. J Vet Diagnostic Invest. 2012;24(3):458-468.
  3. وایزر جی. جمع‌آوری، پردازش و تجزیه و تحلیل نمونه از گزینه‌های خدمات آزمایشگاهی. در: ترال ام.ای، وایزر جی، آلیسون آر، کمپبل تی، ویراستاران. خون‌شناسی دامپزشکی و شیمی بالینی. ویرایش دوم. جان وایلی و پسران؛ ۲۰۱۲: ۳۴-۳۹.
  4. استکهام اس ال، اسکات ام ای. گلبول‌های قرمز. در: استکهام اس ال، اسکات ام ای. مبانی آسیب‌شناسی بالینی دامپزشکی. چاپ دوم. انتشارات بلک‌ول؛ ۲۰۰۸: ۱۰۷-۲۲۱.
  5. وایزر جی. فناوری آزمایشگاهی برای دامپزشکی. در: ترال ام.ای، وایزر جی، آلیسون آر، کمپبل تی، ویراستاران. خون‌شناسی دامپزشکی و شیمی بالینی. ویرایش دوم. جان وایلی و پسران؛ ۲۰۱۲: ۳-۳۳.
  6. نورمن ای‌جی، بارون آر‌سی، نش ای‌اس، کلمپیت آر‌بی. شیوع شمارش پلاکت‌های پایین خودکار در گربه‌ها: مقایسه با شیوع ترومبوسیتوپنی بر اساس ارزیابی اسمیر خون. دامپزشک کلین پاتولو. 2001;30(3):137-140.
  7. ریوند بی، واسموث ای کی، هارتناک اس، هافمن-لهمن آر، لوتز اچ. پیشگیری مؤثر از شبه ترومبوسیتوپنی در نمونه‌های خون گربه با ایلوپروست آنالوگ پروستاگلاندین I2. BMC Vet Res. 2015;11:183.
  8. استکهام اس.ال.، اسکات ام.ای.. هموستاز. در: استکهام اس.ال.، اسکات ام.ای. مبانی آسیب‌شناسی بالینی دامپزشکی. چاپ دوم. انتشارات بلک‌ول؛ ۲۰۰۸: ۲۶۱-۳۲۱.
  9. Furlanello T، Tasca S، Caldin M، و همکاران. تغییرات مصنوعی در خون سگ پس از ذخیره سازی، شناسایی شده با استفاده از آنالیزور هماتولوژی ADVIA 120. دامپزشک کلین پاتولو. 2006;35(1):42-46.
  10. بورگس-آبلا ان اچ، گفره ای، دشویلرز پی ال، براون جی پی، ترومل سی. تغییرات در اندازه‌گیری‌های هماتولوژی در خون سگ‌های سالم و بیمار که به مدت ۲۴ و ۴۸ ساعت در دمای اتاق با استفاده از آنالیزور XT-2000iV نگهداری شده‌اند. کلینیک دامپزشکی. 2014;43(1):24-35.
  11. Bau-Gaudreault L، Grimes CN. تأثیر زمان و ذخیره‌سازی بر تغییرات سمی یا شبه‌سمی در نوتروفیل‌های سگ. دامپزشک کلین پاتولو. 2019;48(3):400-405.
  12. هاروی جی. ارزیابی گلبول‌های قرمز. در: هاروی جی. خون‌شناسی دامپزشکی: راهنمای تشخیصی و اطلس رنگی. الزویر ساندرز؛ ۲۰۱۲:۸۸.

مقالات پیشنهادی:

  • بار سی ای، جیانوتی جی، گرافئو سی ای، دروباتز کی جی، سیلورستین دی سی. تأثیر خونگیری با روش فشار-کشش از کاتتر دائمی در مقابل رگ‌گیری مستقیم بر مقادیر گازهای خون وریدی قبل و بعد از تجویز آلفاکسالون یا پروپوفول در سگ‌ها. انجمن دامپزشکی آمریکا (J Am Vet Med Assoc). 2017;25(10):1160-1165.
  • هانسون ک، لینکلیتر آ. قرار دادن کاتتر نمونه‌برداری مرکزی از طریق ورید محیطی. خلاصه پزشک. 2014;12(12):57-62.
به بالا بروید