- Les 5 erreurs les plus fréquentes lors du prélèvement et de l'échantillonnage sanguin
- Erreurs lors du prélèvement sanguin dans les laboratoires commerciaux et cliniques
- Introduction
- 1. Patient non à jeun – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors des prélèvements sanguins
- 2. Hémolyse in vitro – Les 5 principales erreurs lors du prélèvement sanguin
- 3. Échantillon coagulé – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'un prélèvement sanguin
- 4. Volume d'échantillon insuffisant (échantillon trop petit) – Les 5 principales erreurs lors du prélèvement sanguin
- 5. Traitement retardé – Les 5 principales erreurs lors du prélèvement sanguin
- Questions fréquentes sur les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
- Résumé : Les 5 principales erreurs lors du prélèvement sanguin et leur impact sur les résultats de laboratoire
- Sources :
Les 5 erreurs les plus fréquentes lors du prélèvement et de l'échantillonnage sanguin
Article original de : Linn Clarizio, DMV, Université d'État du Kansas
Lisa M. Pohlman, DVM, MS, DACVP, Université d'État du Kansas
Erreurs lors du prélèvement sanguin dans les laboratoires commerciaux et cliniques
Introduction
Les erreurs commises dans les laboratoires vétérinaires – tant en milieu clinique que commercial – peuvent être divisées en trois catégories :
- Erreurs préanalytiques : Ces erreurs surviennent avant l'analyse proprement dite et sont liées à des erreurs de prélèvement et de manipulation des échantillons. Elles constituent la source d'erreur la plus fréquente dans les laboratoires d'analyses humaines et vétérinaires.
- Erreurs analytiques : Ces problèmes surviennent lors des tests en laboratoire et sont liés à des facteurs tels que la précision, la sensibilité et la spécificité du matériel ou des méthodes utilisées.
- Erreurs post-analytiques : Ces erreurs surviennent après l'analyse et sont souvent dues à une documentation défectueuse ou à une mauvaise interprétation des résultats.
Selon les auteurs, les cinq erreurs suivantes figurent parmi les problèmes pré-analytiques les plus courants pouvant conduire à des résultats de laboratoire incorrects.
1. Patient non à jeun – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Augmenté Taux de triglycérides, qui est Lipémie La lipémie peut être causée par des facteurs pathologiques ou par un repas pris avant le prélèvement sanguin. Dans la plupart des cas, elle survient… changement postprandial chez les patients qui ne sont pas à jeun (voir figures 1 et 2).
Comment la lipémie affecte-t-elle les résultats de laboratoire ?
La lipémie augmente Turbidité du sérum et du plasma, ce qui peut fausser les tests qui reposent sur la diffusion de la lumière, par exemple :
- Taux de protéines totales (mesurés par réfractométrie)
- Taux d'hémoglobine et indices associés
- Taux de bilirubine
Les taux de lipides peuvent également être faussement bas. Niveaux d'électrolytes cause, surtout si l'échantillon est con potentiométrie indirecte La mesure est effectuée. De nombreux instruments analytiques diluent l'échantillon avant la mesure, ce qui peut entraîner des problèmes avec les échantillons lipémiques. Déplacement volumique Cela entraîne : les niveaux élevés de triglycérides déplacent l'eau, augmentant ainsi la concentration mesurée de Sodium, potassium et chlorure paraît faussement inférieur.
💡 Solution: La méthode la plus simple pour éviter les erreurs liées à la lipémie est d'inciter les propriétaires d'animaux à vérifier leurs animaux. Un jeûne de 8 à 12 heures doit être observé avant le prélèvement sanguin..
2. Hémolyse in vitro – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Hémolyse désigne la destruction des globules rouges, entraînant la transformation du plasma ou du sérum en décoloration rose à rouge suppose (voir Fig. 3). L'hémolyse peut soit pathologique (in vivo) ou liés aux artefacts (in vitro) apparaître.
Causes de l'hémolyse in vitro :
- Prélèvement sanguin traumatique en raison d'aiguilles trop petites ou d'une aspiration trop forte avec la seringue
- Manipulation incorrecte comme par exemple, agiter vigoureusement l'échantillon
- températures extrêmes (par exemple, refroidissement direct sur glace ou chaleur)
- Traitement retardé l'échantillon
Conséquences de l'hémolyse :
- Valeurs hématologiques incorrectes :
- faussement bas le nombre d'érythrocytes
- Valeurs d'hématocrite incorrectes
- Influence sur les tests biochimiques :
- L'hémoglobine libre absorbe la lumière et peut interférer avec les tests enzymatiques tels que Bilirubine, créatine kinase et cholestérol déranger.
- Les composants intracellulaires tels que Potassium, VIEUX et AST sont libérées et peuvent entraîner des lectures faussement élevées.
💡 Solution:
- Prélèvement sanguin délicat à l'aide d'aiguilles de gros calibre (par exemple,. 20 g pour chiens/chats, 18 g pour chevaux/bovins)
- N’utilisez pas une forte aspiration avec la seringue.
- Conserver l'échantillon dans un endroit frais, mais non congelé.
- Analyse rapide ou centrifugation préalable
3. Échantillon coagulé – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Un échantillon de sang coagulé peut être temps d'extraction long, perforation traumatique ou mélange insuffisant avec l'anticoagulant surgir.
Pourquoi les caillots sanguins sont-ils problématiques ?
- Peut Équipement de laboratoire de blocage et entraîner des réparations coûteuses
- Peut être incorrect numération plaquettaire cause (pseudothrombocytopénie)
- Défectueux Tests d'hématologie et de coagulation
💡 Solution:
- Prélèvement sanguin rapide avec une canule appropriée
- Mélanger immédiatement et délicatement (incliner 8 à 10 fois, ne pas secouer !)
- Inspection visuelle pour détecter la présence de caillots avant l'analyse
4. Volume d'échantillon insuffisant (échantillon trop petit) – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Un volume sanguin insuffisant peut entraîner résultats de laboratoire erronés Cela peut entraîner des problèmes car le rapport entre l'anticoagulant et le sang est perturbé.
Problèmes liés à un échantillon insuffisant :
- Tubes EDTA : L'EDTA hypertonique attire l'eau des érythrocytes, ce qui conduit à des résultats incorrects. valeurs d'hématocrite causé.
- Tubes à citrate (tests de coagulation) : Nécessite un rapport exact de 1:9 (anticoagulant:sang).
- Tubes de sérum : Si la quantité de sang est insuffisante, la séparation du sérum peut ne pas être suffisante pour tous les tests.
💡 Solution:
- Toujours jusqu'au marqueur remplir le tube
- À Contactez le laboratoire si l'échantillon de sang est petit.
5. Traitement retardé – Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Si les échantillons de sang ne sont pas analysés rapidement, la morphologie et la composition chimique des cellules peuvent se modifier.
Problèmes causés par un traitement retardé :
- Gonflement des érythrocytes → Valeurs d'hématocrite incorrectes
- Dégradation du glucose → Faux taux de glycémie bas
- L’activité enzymatique persiste → Taux d’enzymes hépatiques faussement élevés (ALT, AST)
- Les mycoplasmes (parasites sanguins) peuvent se détacher des érythrocytes → Diagnostic manqué de l'infection
💡 Solution:
- Évaluer les analyses sanguines dans les 12 heures
- Si nécessaire, séparer le sérum/plasma et le conserver à 4 °C.
Questions fréquentes sur les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang
Pourquoi est-il important qu'un animal soit à jeun avant une prise de sang ?
Si un animal n'est pas à jeun, cela peut affecter considérablement ses valeurs sanguines, notamment par le biais de Lipémie – un trouble du plasma dû à des taux élevés de lipides sanguins (triglycérides).
Quel est l'effet de la lipémie sur les résultats de laboratoire ?
Erreurs de mesure des électrolytes : Les lipides déplacent l'eau dans le plasma, ce qui donne l'impression que les concentrations d'électrolytes sont faussement plus faibles (par exemple, sodium, potassium, chlorure).
Taux de protéines et d'hémoglobine anormaux : Les méthodes de diffusion de la lumière utilisées pour mesurer les protéines totales ou l'hémoglobine peuvent être perturbées par la lipémie.
Effets sur la fonction hépatique : En particulier, les tests de bilirubine peuvent devenir peu fiables.
Combien de temps un animal doit-il jeûner avant qu'on lui prélève du sang ?
Chiens et chats : 8 à 12 heures
Chevaux: 12 à 24 heures
Ruminants (bovins, ovins, caprins) : 4 à 12 heures, en fonction de la vitesse de digestion
Existe-t-il des exceptions à la règle du jeûne ?
Oui ! Certains animaux ne doivent pas être gardés l'estomac vide, par exemple :
animaux jeunes, malades ou en sous-poids, car ils sont plus sujets à l'hypoglycémie.
animaux diabétiques, car une période de jeûne prolongée peut faire chuter drastiquement leur glycémie.
patients des urgences, lorsque des résultats de laboratoire immédiats sont requis.
S'il est impossible de prélever du sang sur un animal à jeun, le laboratoire doit être informé de l'état nutritionnel de l'animal afin d'interpréter correctement les résultats des analyses.
Comment puis-je prévenir l'hémolyse lors d'un prélèvement sanguin ?
Hémolyse, La rupture des globules rouges, ou leur éclatement, fausse de nombreux résultats d'analyses. Elle peut survenir lors du prélèvement sanguin ou suite à une manipulation incorrecte de l'échantillon.
Causes typiques d'hémolyse :
Prélèvement sanguin traumatique :L'utilisation d'aiguilles trop petites ou l'application d'une aspiration trop forte avec la seringue entraînent une pression négative élevée qui détruit les érythrocytes.
Manipulation inappropriée :Une agitation vigoureuse ou un pipetage excessivement rapide peuvent endommager mécaniquement les cellules.
Fluctuations de température :Le froid direct (par exemple, le stockage sur glace) ou la chaleur (par exemple, la lumière du soleil) peuvent déstabiliser les membranes cellulaires.
Délais de traitement longs :Si l'échantillon n'est pas centrifugé à temps, les globules rouges peuvent se désintégrer spontanément.
Mesures de prévention de l'hémolyse :
✅ Prélèvement sanguin en douceur : Utilisez une aiguille suffisamment grosse (au moins 20 g pour chiens/chats, 18 g pour chevaux/bovins).
✅ Évitez une aspiration excessive avec la seringue : Si vous utilisez une seringue, tirez lentement le piston.
✅ Stockage approprié :
Ne pas refroidir directement sur de la glace, mais conserver au réfrigérateur (4 °C).
Pas de soleil ni de chaleur excessive.
✅ Traitement rapide : Si une analyse immédiate n'est pas possible, centrifugez l'échantillon et séparez le plasma/sérum.
Pourquoi un échantillon de sang doit-il être complètement mélangé à un anticoagulant ?
Les anticoagulants tels que EDTA, héparine ou citrate Ils empêchent la coagulation du sang, mais ne sont efficaces que s'ils sont correctement mélangés à l'échantillon.
Que se passe-t-il si un échantillon n'est pas suffisamment mélangé ?
Formation de microcaillots : Peut entraîner une fausse baisse du nombre de plaquettes (pseudothrombocytopénie).
Erreurs dans les mesures de la numération sanguine : Les caillots peuvent emprisonner les cellules, ce qui peut entraîner une détection moindre des érythrocytes et des leucocytes par le compteur de cellules.
Blocage des équipements de laboratoire : Les agglomérats peuvent obstruer les pipettes ou les tubes d'analyse et entraîner des réparations coûteuses.
Comment préparer un échantillon correctement ?
Après le retrait : tube Inclinez doucement plusieurs fois (8 à 10 fois)., Ne secouez pas !
Prévention de la coagulation : Apportez les échantillons destinés à l'hématologie au laboratoire immédiatement après le prélèvement sanguin.
En cas de retards de transport : À conserver au réfrigérateur, mais ne pas congeler.
Si un échantillon a coagulé, il peut être utilisé pour de nombreuses analyses. n'est plus utilisé Un nouveau test sanguin sera alors nécessaire.
Pourquoi un échantillon de sang trop petit pose-t-il problème ?
Un taille d'échantillon insuffisante Cela peut entraîner des résultats de laboratoire incorrects car le rapport anticoagulant/sang est incorrect.
Que se passe-t-il s'il n'y a pas assez de sang dans le tube ?
Pour les tubes EDTA :L'anticoagulant est hypertonique et attire l'eau des globules rouges → morphologie cellulaire altérée et valeurs d'hématocrite incorrectes.
Pour les tubes au citrate (tests de coagulation) :Le rapport anticoagulant/sang est perturbé → temps de coagulation prolongés de manière incorrecte.
Pour les tubes à sérum :Si la quantité de sérum obtenue est insuffisante, certains tests ne peuvent pas être effectués.
Conseils pour un prélèvement sanguin correct :
✅ Utilisez le tube de la bonne taille : Toujours remplir jusqu'au repère.
✅ Si la quantité de sang disponible est faible : Contactez le laboratoire pour savoir si une autre procédure est possible.
✅ Veillez à ce que l'animal soit bien hydraté : Les animaux déshydratés présentent souvent une mauvaise circulation sanguine.
Pourquoi est-il important de traiter rapidement les échantillons de sang ?
Un traitement retardé Cela peut fausser de nombreux résultats de laboratoire. En effet, les cellules sanguines et les enzymes restent actives et les réactions chimiques se poursuivent.
Quels problèmes peuvent découler d'un traitement retardé ?
Modifications cellulaires :Les érythrocytes peuvent gonfler, ce qui entraîne valeurs d'hématocrite et de VGM incorrectes conduit.
Des modifications pseudotoxiques surviennent dans les neutrophiles, ce qui peut conduire à des erreurs de diagnostic.
Interprétations erronées dues à des changements métaboliques :La dégradation du glucose se poursuit → taux de glycémie faussement bas.
Les enzymes (par exemple, ALT, AST) peuvent rester actives → Élévation des taux d'enzymes hépatiques sans lésion hépatique avérée..
Les parasites peuvent disparaître :Chez les chats, les mycoplasmes se détachent de la surface cellulaire et ne sont plus détectés.
Comment éviter les retards de traitement ?
✅ Traitement immédiat ou stockage séparé du sérum/plasma
✅ Évaluer les analyses sanguines dans les 12 heures, idéalement immédiatement.
✅ Si un retard est inévitable : Réfrigérer les échantillons (4 °C) ou congeler le sérum/plasma.
Résumé : Les 5 principales erreurs lors du prélèvement sanguin et leur impact sur les résultats de laboratoire
Le Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Les erreurs préanalytiques, c’est-à-dire les erreurs survenant lors du prélèvement ou de la manipulation du sang, sont la cause la plus fréquente de résultats d’analyse inexacts. Ce résumé aborde les points suivants : Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang expliqué en détail afin de sensibiliser les vétérinaires et le personnel de laboratoire aux problèmes potentiels et d'améliorer la qualité des échantillons sanguins.
1. Patient non à jeun – L’une des 5 erreurs les plus fréquentes lors d’une prise de sang
Un patient qui ne jeûne pas peut développer un Lipémie Cela peut entraîner des résultats sanguins anormaux qui troublent le sang et affectent plusieurs valeurs de laboratoire. Les tests basés sur la diffusion de la lumière, tels que ceux mesurant les protéines totales, l'hémoglobine et la bilirubine, sont particulièrement touchés. Les taux d'électrolytes peuvent également apparaître faussement bas car les triglycérides modifient le volume plasmatique. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Par conséquent, le fait de ne pas donner aux propriétaires les instructions nécessaires pour assurer la sécurité de leurs animaux est... Un jeûne de 8 à 12 heures doit être observé avant le prélèvement sanguin..
2. Hémolyse in vitro – Un point critique parmi les 5 principales erreurs de prélèvement sanguin
L'hémolyse survient lorsque les globules rouges se rompent et peut entraîner des anomalies des taux de potassium, des enzymes hépatiques et des enzymes. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Ceci est particulièrement problématique car les molécules d'hémoglobine libres peuvent fausser les résultats du test. L'hémolyse peut être causée par une aiguille trop fine, une forte aspiration avec la seringue, une agitation vigoureuse de l'échantillon ou des différences de température. Pour éviter cela, Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Pour éviter cela, le prélèvement sanguin doit être effectué délicatement à l'aide d'une canule adaptée.
3. Échantillon coagulé – L’une des 5 principales erreurs évitables lors du prélèvement sanguin
Un mélange insuffisant avec l'anticoagulant peut entraîner la formation de caillots sanguins, susceptibles d'obstruer le matériel de laboratoire ou de fausser les résultats. Cette erreur est particulièrement fréquente avec les tubes contenant de l'EDTA ou du citrate. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Cela inclut un mélange insuffisant de l'échantillon après le prélèvement. Un mélange immédiat et délicat par Inclinez le tube 8 à 10 fois. peut éviter cette erreur.
4. Volume d'échantillon insuffisant – Une erreur souvent négligée parmi les 5 principales lors du prélèvement sanguin
Un volume d'échantillon insuffisant peut fausser les résultats de laboratoire car le rapport sang/anticoagulant est incorrect. Ceci conduit à des tests de coagulation ou à des valeurs d'hématocrite erronées. Parmi les Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Il s'agit là d'une des erreurs les plus fréquentes et pourtant évitables. Les prélèvements sanguins doivent toujours être effectués jusqu'au repère sur le tube Ce champ doit être rempli pour garantir des valeurs correctes.
5. Traitement retardé – La dernière, mais non la moins importante, des 5 principales erreurs de prélèvement sanguin.
Si un échantillon de sang n'est pas traité immédiatement, les cellules sanguines et leurs composants chimiques peuvent se modifier. Un test retardé peut entraîner des valeurs d'hématocrite erronées, une glycémie plus basse ou des anomalies des enzymes hépatiques. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Cela inclut également le traitement différé des échantillons. Pour éviter cette erreur, les échantillons de sang doivent être traités le plus rapidement possible. Analyse effectuée en moins de 12 heures ou conservé à 4 °C.
Conclusion : Éviter les 5 principales erreurs de prélèvement sanguin pour des diagnostics fiables
Le Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Ces risques sont évitables si le prélèvement, la manipulation et le traitement des échantillons sont effectués correctement. Nombre d'entre eux peuvent être prévenus par des mesures simples telles que le jeûne du patient, un prélèvement sanguin délicat, un mélange adéquat avec un anticoagulant, un volume d'échantillon suffisant et un traitement rapide. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Cela peut être évité. Les vétérinaires et le personnel de laboratoire doivent s'en prémunir. Les 5 erreurs les plus fréquentes lors d'une prise de sang Il convient d'en tenir compte afin d'améliorer la qualité des diagnostics et de garantir l'exactitude des valeurs de laboratoire.
Sources :
- Stockham SL, Scott MA. Concepts introductifs. Dans : Stockham SL, Scott MA. Principes fondamentaux de la pathologie clinique vétérinaire. 2e éd. Blackwell Publishing; 2008:3-51.
- Hooijberg E, Leidinger E, Freeman K. Un système de gestion des erreurs dans un laboratoire clinique vétérinaire. J Vet Diagn Invest. 2012;24(3):458-468.
- Weiser G. Collecte, traitement et analyse des échantillons des options de services de laboratoire. Dans : Thrall MA, Weiser G, Allison R, Campbell T, eds. Hématologie et chimie clinique vétérinaires. 2e éd. John Wiley & Sons; 2012:34-39.
- Stockham SL, Scott MA. Érythrocytes. Dans : Stockham SL, Scott MA. Principes fondamentaux de la pathologie clinique vétérinaire. 2e éd. Blackwell Publishing; 2008:107-221.
- Weiser G. Technologie de laboratoire pour la médecine vétérinaire. Dans : Thrall MA, Weiser G, Allison R, Campbell T, eds. Hématologie et chimie clinique vétérinaires. 2e éd. John Wiley & Sons; 2012:3-33.
- Norman EJ, Barron RC, Nash AS, Clampitt RB. Prévalence des faibles taux de plaquettes automatisés chez les chats : comparaison avec la prévalence de la thrombocytopénie basée sur l’évaluation du frottis sanguin. Pathologie clinique vétérinaire. 2001;30(3):137-140.
- Riond B, Waßmuth AK, Hartnack S, Hofmann-Lehmann R, Lutz H. Prévention efficace de la pseudothrombocytopénie dans les échantillons de sang félin avec l'analogue de la prostaglandine I2 iloprost. BMC Vet Res. 2015;11:183.
- Stockham SL, Scott MA. Hémostase. Dans : Stockham SL, Scott MA. Principes fondamentaux de la pathologie clinique vétérinaire. 2e éd. Blackwell Publishing; 2008:261-321.
- Furlanello T, Tasca S, Caldin M, et al. Modifications artificielles du sang canin après stockage, détectées à l'aide de l'analyseur d'hématologie ADVIA 120. Pathologie clinique vétérinaire. 2006;35(1):42-46.
- Bourgès-Abella NH, Geffré A, Deshuillers PL, Braun JP, Trumel C. Changements dans les mesures hématologiques du sang de chiens sains et malades conservé à température ambiante pendant 24 et 48 heures à l'aide de l'analyseur XT-2000iV. Pathologie clinique vétérinaire. 2014;43(1):24-35.
- Bau-Gaudreault L, Grimes CN. Effet du temps et du stockage sur les changements toxiques ou pseudo-toxiques des neutrophiles canins. Pathologie clinique vétérinaire. 2019;48(3):400-405.
- Harvey J. Évaluation des érythrocytes. Dans : Harvey J. Hématologie vétérinaire : Guide diagnostique et atlas en couleurs. Elsevier Saunders; 2012:88.
Articles recommandés :
- Barr CA, Gianotti G, Graffeo CE, Drobatz KJ, Silverstein DC. Effet du prélèvement sanguin par la technique push-pull à partir d'un cathéter à demeure par rapport à la ponction veineuse directe sur les valeurs des gaz du sang veineux avant et après l'administration d'alfaxalone ou de propofol chez le chien. J Am Vet Med Assoc. 2017;25(10):1160-1165.
- Hanson K, Linklater A. Mise en place d'un cathéter de prélèvement central par voie veineuse périphérique. Résumé du clinicien. 2014;12(12):57-62.