5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Oryginalny artykuł autorstwa: Linn Clarizio, DVM, Uniwersytet Stanowy w Kansas
Lisa M. Pohlman, lekarz weterynarii, magister, doktor farmacji, wiceprezes ds. medycyny, Uniwersytet Stanowy Kansas

Błędy w pobieraniu krwi w laboratoriach komercyjnych i klinicznych

Wstęp

Błędy popełniane w laboratoriach weterynaryjnych – zarówno w warunkach klinicznych, jak i komercyjnych – można podzielić na trzy kategorie:

Błędy przedanalityczne: Błędy te występują przed rozpoczęciem analizy i są związane z błędami w pobieraniu i przetwarzaniu próbek. Są one najczęstszym źródłem błędów w laboratoriach medycznych i weterynaryjnych.
Błędy analityczne: Problemy te pojawiają się podczas badań laboratoryjnych i dotyczą takich czynników, jak dokładność, czułość i swoistość sprzętu lub stosowanych metod.
Błędy poanalityczne: Błędy te pojawiają się po przeprowadzeniu analizy i często wynikają z błędnej dokumentacji lub błędnej interpretacji wyników.

Zdaniem autorów poniższe pięć błędów zalicza się do najczęstszych problemów przedanalitycznych, które mogą prowadzić do nieprawidłowych wyników laboratoryjnych.

1. Pacjent nie będący na czczo – 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Zwiększony Poziomy trójglicerydów, który jest Lipemia Lipemia może być spowodowana czynnikami patologicznymi lub posiłkiem spożytym przed pobraniem krwi. W większości przypadków występuje jako... zmiana poposiłkowa u pacjentów, którzy nie poszczą (patrz rys. 1 i 2).

Jak lipemia wpływa na wyniki badań laboratoryjnych?

Lipemia zwiększa Mętność surowicy i osocza, co może zniekształcać testy oparte na rozpraszaniu światła, np.:

Całkowity poziom białka (mierzony metodą refraktometrii)
Poziom hemoglobiny i powiązane wskaźniki
Poziom bilirubiny

Poziom lipidów może być również fałszywie niski. Poziom elektrolitów przyczyna, zwłaszcza jeśli próbka jest potencjometria pośrednia jest mierzony. Wiele instrumentów analitycznych rozcieńcza próbkę przed pomiarem, co może prowadzić do problemów z próbkami lipemicznymi. Przemieszczenie objętości Prowadzi to do: Wysokie stężenie trójglicerydów wypiera wodę, zwiększając w ten sposób mierzone stężenie Sód, potas i chlorek wydaje się fałszywie niższy.

💡 Rozwiązanie: Najprostszą metodą uniknięcia błędów związanych z lipemią jest poinstruowanie właścicieli zwierząt domowych, aby sprawdzali swoje zwierzęta Przed pobraniem krwi należy powstrzymać się od spożywania posiłku przez 8–12 godzin..

TOP 5 błędów 2 — 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

2. Hemoliza in vitro – 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Hemoliza odnosi się do zniszczenia czerwonych krwinek, powodując, że osocze lub surowica stają się przebarwienie od różowego do czerwonego zakłada (patrz rys. 3). Hemoliza może patologiczny (in vivo) Lub związane z artefaktami (in vitro) pojawić się.

Przyczyny hemolizy in vitro:

Pobieranie krwi w przypadku urazu z powodu zbyt małych igieł lub zbyt mocnego ssania strzykawki
Niewłaściwe obchodzenie się takie jak energiczne potrząsanie próbką
Ekstremalne temperatury (np. bezpośrednie chłodzenie lodem lub ciepłem)
Opóźnione przetwarzanie próbka

Konsekwencje hemolizy:

Nieprawidłowe wartości hematologiczne:
- Fałszywie niska liczba erytrocytów
- Nieprawidłowe wartości hematokrytu
Wpływ na testy biochemiczne:
- Wolna hemoglobina pochłania światło i może zakłócać testy enzymatyczne, takie jak Bilirubina, kinaza kreatynowa i cholesterol przeszkadzać.
- Składniki wewnątrzkomórkowe, takie jak Potas, STARY i AST są uwalniane i mogą powodować fałszywie wysokie odczyty.

💡 Rozwiązanie:

Delikatne pobieranie krwi za pomocą igieł o dużej średnicy (np. 20 g dla psów/kotów, 18 g dla koni/bydła)
Nie należy stosować silnego ssania przy użyciu strzykawki.
Przechowuj próbkę w chłodnym, ale nie zamrożonym miejscu.
Szybka analiza lub wcześniejsze wirowanie

TOP 5 błędów 3 — 5 najczęstszych błędów podczas pobierania krwi 11

3. Skoagulowana próbka – 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Jeden próbka skrzepniętej krwi może być długi czas ekstrakcji, przebicie urazowe Lub niewystarczające mieszanie z antykoagulantem powstać.

Dlaczego zakrzepy krwi są problemem?

Móc Blokowanie sprzętu laboratoryjnego i prowadzić do kosztownych napraw
Czy może być niepoprawne? liczba płytek krwi przyczyna (pseudotrombocytopenia)
Uszkodzony Badania hematologiczne i krzepnięcia

💡 Rozwiązanie:

Szybkie pobieranie krwi z odpowiednią kaniulą
Natychmiast delikatnie wymieszaj (przechyl 8-10 razy, nie potrząsaj!)
Przed analizą należy przeprowadzić kontrolę wizualną w celu wykrycia skrzepów

5 najczęstszych błędów 4 — 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi 12

4. Niewystarczająca objętość próbki (próbka zbyt mała) – 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Niedostateczna objętość krwi może prowadzić do fałszywe wyniki badań laboratoryjnych Może to prowadzić do problemów, ponieważ zostaje zaburzony stosunek środka przeciwzakrzepowego do krwi.

Problemy wynikające z niewystarczającej próbki:

Probówki EDTA: Hipertoniczny EDTA powoduje odwodnienie erytrocytów, co prowadzi do nieprawidłowych wyników. Wartości hematokrytu spowodowany.
Probówki cytrynianowe (testy krzepnięcia): Wymaga dokładnego stosunku 1:9 (antykoagulant:krew).
Probówki do pobierania surowicy: Jeśli krwi jest za mało, oddzielenie surowicy może nie być wystarczające do przeprowadzenia wszystkich testów.

💡 Rozwiązanie:

Zawsze do znacznika napełnić rurkę
Na Jeśli próbka krwi jest mała, skontaktuj się z laboratorium.

5 najczęstszych błędów 6 — 5 najczęstszych błędów podczas pobierania krwi 14

5. Opóźnione przetwarzanie – 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Jeżeli próbki krwi nie zostaną szybko przeanalizowane, morfologia komórek i skład chemiczny mogą ulec zmianie.

Problemy spowodowane opóźnionym przetwarzaniem:

Obrzęk erytrocytów → Nieprawidłowe wartości hematokrytu
Rozpad glukozy → Fałszywie niski poziom cukru we krwi
Aktywność enzymów utrzymuje się → Fałszywie podwyższone poziomy enzymów wątrobowych (ALT, AST)
Mykoplazmy (pasożyty krwi) mogą oddzielać się od erytrocytów → Błędne rozpoznanie zakażenia

💡 Rozwiązanie:

Oceń wyniki badań krwi w ciągu 12 godzin
W razie konieczności oddzielić surowicę od osocza i przechowywać w temperaturze 4 °C.

5 najczęstszych błędów 7 — 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

Najczęściej zadawane pytania o 5 najczęstszych błędach przy pobieraniu krwi

Dlaczego ważne jest, aby zwierzę było na czczo przed pobraniem krwi?

Jeżeli zwierzę nie pości, może to znacząco wpłynąć na wartości krwi, szczególnie poprzez Lipemia – zmętnienie osocza spowodowane podwyższonym poziomem lipidów we krwi (triglicerydów).
Jaki wpływ ma lipemia na wyniki badań laboratoryjnych?
Błędy pomiaru elektrolitu: Lipidy wypierają wodę z osocza, przez co stężenia elektrolitów (np. sodu, potasu, chlorków) wydają się fałszywie niższe.
Zniekształcone poziomy białka i hemoglobiny: Lipemia może zaburzyć metody rozpraszania światła stosowane do pomiaru całkowitego białka lub hemoglobiny.
Wpływ na funkcjonowanie wątroby: W szczególności testy bilirubiny mogą okazać się mało wiarygodne.
Jak długo zwierzę powinno pościć przed pobraniem krwi?
Psy i koty: od 8 do 12 godzin
Konie: od 12 do 24 godzin
Przeżuwacze (bydło, owce, kozy): od 4 do 12 godzin, w zależności od szybkości trawienia
Czy istnieją jakieś wyjątki od reguły postu?
Tak! Niektórych zwierząt nie należy trzymać na pusty żołądek, np.:
Młode, chore lub niedowagowe zwierzęta, ponieważ są bardziej podatne na hipoglikemię.
Zwierzęta chore na cukrzycę, ponieważ dłuższy okres postu może drastycznie obniżyć poziom cukru we krwi.
Pacjenci w nagłych wypadkach, gdy wymagane są natychmiastowe wyniki badań laboratoryjnych.
Jeżeli pobranie krwi od zwierzęcia będącego na czczo jest niemożliwe, należy poinformować laboratorium o stanie odżywienia zwierzęcia, aby móc prawidłowo zinterpretować wyniki badania.

Jak mogę zapobiec hemolizie podczas pobierania krwi?

Hemoliza, Pękanie czerwonych krwinek, czyli ich rozerwanie, zniekształca wiele wyników badań laboratoryjnych. Może do tego dojść podczas pobierania krwi lub w wyniku niewłaściwego obchodzenia się z próbką.
Typowe przyczyny hemolizy:
Pobieranie krwi w przypadku urazu:Użycie zbyt małych igieł lub zastosowanie zbyt dużej siły ssania przy użyciu strzykawki powoduje wytworzenie wysokiego ciśnienia ujemnego, które niszczy erytrocyty.
Niewłaściwe postępowanie:Energiczne potrząsanie lub zbyt szybkie pipetowanie może spowodować mechaniczne uszkodzenie komórek.
Wahania temperatury:Bezpośrednie działanie zimna (np. przechowywanie na lodzie) lub ciepła (np. światło słoneczne) może spowodować destabilizację błon komórkowych.
Długie opóźnienia w przetwarzaniu:Jeśli próbka nie zostanie odwirowana w odpowiednim czasie, czerwone krwinki mogą ulec spontanicznemu rozpadowi.
Środki zapobiegające hemolizie:
✅ Delikatne pobieranie krwi: Użyj wystarczająco dużej igły (co najmniej 20g dla psów/kotów, 18 g dla koni/bydła).
✅ Unikaj nadmiernego zasysania strzykawką: Jeśli używasz strzykawki, powoli odciągnij tłok.
✅ Prawidłowe przechowywanie:
Nie schładzać bezpośrednio na lodzie, lecz przechowywać w lodówce (4 °C).
Unikaj światła słonecznego i nadmiernego ciepła.
✅ Szybkie przetwarzanie: Jeżeli natychmiastowa analiza nie jest możliwa, należy odwirować próbkę i oddzielić osocze od surowicy.

Dlaczego próbkę krwi należy dokładnie wymieszać z antykoagulantem?

Leki przeciwzakrzepowe, takie jak EDTA, heparyna lub cytrynian Zapobiegają krzepnięciu krwi, ale są skuteczne tylko wtedy, gdy zostaną prawidłowo wymieszane z próbką.
Co się stanie, jeśli próbka nie zostanie dostatecznie wymieszana?
Powstawanie mikroskrzepów: Może prowadzić do fałszywie niskiego poziomu płytek krwi (pseudotrombocytopenia).
Błędy w pomiarach morfologii krwi: Skrzepy mogą otaczać komórki, przez co licznik komórek wykrywa mniej erytrocytów i leukocytów.
Blokowanie sprzętu laboratoryjnego: Zbrylenia mogą zatkać pipety lub probówki analityczne i spowodować kosztowne naprawy.
Jak prawidłowo wymieszać próbkę?
Po usunięciu: rura Delikatnie przechyl kilka razy (8-10 razy)., nie potrząsać!
Zapobieganie zakrzepom: Próbki krwi do badań hematologicznych należy dostarczyć do laboratorium bezpośrednio po pobraniu.
W przypadku opóźnień w transporcie: Przechowywać w lodówce, nie zamrażać.
Jeśli próbka uległa skrzepnięciu, można ją wykorzystać do wielu analiz. nie jest już używany W takim przypadku konieczne będzie powtórzenie badania krwi.

Dlaczego zbyt mała próbka krwi może być problematyczna?

Jeden niewystarczająca wielkość próby Może to prowadzić do nieprawidłowych wyników badań laboratoryjnych, ponieważ stosunek środka przeciwzakrzepowego do krwi jest nieprawidłowy.
Co się stanie, jeżeli w rurce będzie za mało krwi?
W przypadku probówek EDTA:Środek przeciwzakrzepowy jest hipertoniczny i usuwa wodę z krwinek → zmieniona morfologia komórek i nieprawidłowe wartości hematokrytu.
Do probówek cytrynianowych (testy krzepnięcia):Zaburzony jest stosunek antykoagulantu do krwi → nieprawidłowo wydłużony czas krzepnięcia.
W przypadku probówek do pobierania surowicy:Jeśli nie uda się uzyskać wystarczającej ilości surowicy, nie można wykonać niektórych badań.
Wskazówki dotyczące prawidłowego pobierania krwi:
✅ Użyj właściwego rozmiaru tubki: Zawsze napełniaj do pełna.
✅ Jeśli dostępna jest niewielka ilość krwi: Skontaktuj się z laboratorium, aby dowiedzieć się, czy możliwe jest zastosowanie innej procedury.
✅ Upewnij się, że zwierzę jest dobrze nawodnione: Odwodnione zwierzęta często mają słabe krążenie krwi.

Dlaczego ważne jest szybkie przetwarzanie próbek krwi?

Jeden opóźnione przetwarzanie Może to zafałszować wiele wyników badań laboratoryjnych. Dzieje się tak, ponieważ komórki krwi i enzymy pozostają aktywne, a reakcje chemiczne zachodzą nadal.
Jakie problemy wynikają z opóźnionego przetwarzania?
Zmiany komórkowe:Erytrocyty mogą puchnąć, co prowadzi do nieprawidłowe wartości hematokrytu i MCV wskazówki.
W neutrofilach zachodzą zmiany pseudotoksyczne, które mogą prowadzić do błędnej diagnozy.
Błędne interpretacje wynikające ze zmian metabolicznych:Glukoza nadal ulega rozkładowi → fałszywie niski poziom cukru we krwi.
Enzymy (np. ALT, AST) mogą pozostać aktywne → Podwyższony poziom enzymów wątrobowych bez faktycznego uszkodzenia wątroby.
Pasożyty można stracić:Mykoplazmy u kotów odrywają się od powierzchni komórek i nie są już rozpoznawane.
Jak można uniknąć opóźnionego przetwarzania?
✅ Natychmiastowe przetwarzanie lub oddzielne przechowywanie surowicy/osocza
✅ Należy wykonać ocenę wyników badań krwi w ciągu 12 godzin, najlepiej natychmiast.
✅ Jeżeli opóźnienie jest nieuniknione: Przechowywać próbki w lodówce (4 °C) lub zamrozić surowicę/osocze.

Podsumowanie: 5 najczęstszych błędów w pobieraniu krwi i ich wpływ na wyniki badań laboratoryjnych

Ten 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Błędy przedanalityczne, czyli błędy występujące podczas pobierania krwi lub jej obróbki, są najczęstszą przyczyną niedokładnych wyników badań. W niniejszym podsumowaniu omówiono 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi szczegółowo wyjaśnione, aby podnieść świadomość lekarzy weterynarii i personelu laboratorium na temat potencjalnych problemów i poprawić jakość próbek krwi.

1. Pacjent nie będący na czczo – Jeden z 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi

U pacjenta, który nie pości, może rozwinąć się Lipemia Może to prowadzić do nieprawidłowych odczytów krwi, które powodują jej zmętnienie i wpływają na kilka wyników badań laboratoryjnych. Szczególnie narażone są testy oparte na rozpraszaniu światła, takie jak pomiary białka całkowitego, hemoglobiny i bilirubiny. Poziomy elektrolitów mogą również wydawać się fałszywie zaniżone, ponieważ trójglicerydy zmieniają objętość osocza. Jednym z 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Dlatego też brak instrukcji odnośnie dbania o bezpieczeństwo zwierząt jest... Przed pobraniem krwi należy powstrzymać się od spożywania posiłku przez 8–12 godzin..

2. Hemoliza in vitro – krytyczny punkt wśród 5 najczęstszych błędów w pobieraniu krwi

Hemoliza występuje, gdy czerwone krwinki pękają i może powodować nieprawidłowe poziomy potasu, wątroby i enzymów. Wśród 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Jest to szczególnie problematyczne, ponieważ wolne cząsteczki hemoglobiny mogą zaburzać wyniki testu. Przyczynami hemolizy są: zbyt mała igła, silne ssanie strzykawką, energiczne potrząsanie próbką lub różnice temperatur. Aby temu zapobiec, 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Aby tego uniknąć, krew należy pobierać ostrożnie, używając odpowiedniej kaniuli.

3. Skrzepnięta próbka – jeden z 5 najczęstszych błędów, których można uniknąć podczas pobierania krwi

Niedostateczne wymieszanie z antykoagulantem może prowadzić do tworzenia się skrzepów krwi, które mogą zablokować sprzęt laboratoryjny lub dać niedokładne wyniki. Ten błąd występuje szczególnie często w przypadku probówek z EDTA lub cytrynianem. 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Obejmuje to niedostateczne wymieszanie próbki po pobraniu. Natychmiastowe, delikatne wymieszanie przez Przechyl rurkę 8-10 razy można uniknąć tego błędu.

4. Niewystarczająca objętość próbki – często pomijany jeden z 5 najczęstszych błędów w pobieraniu krwi

Niewystarczająca objętość próbki może zafałszować wyniki badań laboratoryjnych, ponieważ stosunek krwi do antykoagulantu jest nieprawidłowy. Prowadzi to do błędnych wyników badań krzepnięcia lub wartości hematokrytu. 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi To jeden z najczęstszych błędów, których można uniknąć. Próbki krwi zawsze powinny być do znaku na rurce musi zostać wypełnione, aby zapewnić prawidłowe wartości.

5. Opóźnione przetwarzanie – ostatni, ale nie mniej ważny z 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi.

Jeśli próbka krwi nie zostanie natychmiast przetworzona, komórki krwi i składniki chemiczne mogą ulec zmianie. Opóźnione badanie może prowadzić do zafałszowania wartości hematokrytu, obniżenia poziomu glukozy we krwi lub zaburzeń poziomu enzymów wątrobowych. 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Dotyczy to również opóźnionego przetwarzania próbek. Aby uniknąć tego błędu, próbki krwi należy przetwarzać tak szybko, jak to możliwe. Przeanalizowano w ciągu 12 godzin lub przechowywać w temperaturze 4 °C.

Wnioski: Unikanie 5 najczęstszych błędów w pobieraniu krwi w celu postawienia wiarygodnej diagnozy

Ten 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Tego ryzyka można uniknąć, zapewniając prawidłowe pobieranie, obchodzenie się z próbką i jej przetwarzanie. Wielu z nich można uniknąć, stosując proste środki, takie jak pozostawanie pacjenta na czczo, ostrożne pobieranie krwi, prawidłowe mieszanie z antykoagulantem, odpowiednia objętość próbki i szybkie przetwarzanie. 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi Można temu zapobiec. Lekarze weterynarii i personel laboratoryjny powinni tego unikać. 5 najczęstszych błędów przy pobieraniu krwi należy o tym pamiętać, aby poprawić jakość diagnostyki i zapewnić dokładność wyników badań laboratoryjnych.

Źródła:

Stockham SL, Scott MA. Koncepcje wprowadzające. W: Stockham SL, Scott MA. Podstawy weterynaryjnej patologii klinicznej. Wydanie 2. Blackwell Publishing; 2008:3-51.
Hooijberg E, Leidinger E, Freeman K. System zarządzania błędami w weterynaryjnym laboratorium klinicznym. J Vet Diagn Invest. 2012;24(3):458-468.
Weiser G. Pobieranie, przetwarzanie i analiza próbek dostępnych w ramach usług laboratoryjnych. W: Thrall MA, Weiser G, Allison R, Campbell T, red. Hematologia i chemia kliniczna weterynaryjna. Wydanie 2. John Wiley & Sons; 2012:34-39.
Stockham SL, Scott MA. Erytrocyty. W: Stockham SL, Scott MA. Podstawy weterynaryjnej patologii klinicznej. Wydanie 2. Blackwell Publishing; 2008:107-221.
Weiser G. Technologia laboratoryjna w medycynie weterynaryjnej. W: Thrall MA, Weiser G, Allison R, Campbell T, red. Hematologia i chemia kliniczna weterynaryjna. Wydanie 2. John Wiley & Sons; 2012:3-33.
Norman EJ, Barron RC, Nash AS, Clampitt RB. Częstość występowania niskiego zautomatyzowanego zliczania płytek krwi u kotów: porównanie z częstością występowania małopłytkowości na podstawie oceny rozmazu krwi. Klinika Weterynaryjna. 2001;30(3):137-140.
Riond B, Waßmuth AK, Hartnack S, Hofmann-Lehmann R, Lutz H. Skuteczna profilaktyka pseudotrombocytopenii w próbkach krwi kotów przy użyciu analogu prostaglandyny I2 – iloprostu. BMC Vet Res. 2015;11:183.
Stockham SL, Scott MA. Hemostaza. W: Stockham SL, Scott MA. Podstawy weterynaryjnej patologii klinicznej. Wydanie 2. Blackwell Publishing; 2008:261-321.
Furlanello T, Tasca S, Caldin M i in. Zmiany artefaktowe we krwi psów po przechowywaniu, wykryte przy użyciu analizatora hematologicznego ADVIA 120. Klinika Weterynaryjna. 2006;35(1):42-46.
Bourgès-Abella NH, Geffré A, Deshuillers PL, Braun JP, Trumel C. Zmiany w wynikach pomiarów hematologicznych krwi zdrowych i chorych psów przechowywanej w temperaturze pokojowej przez 24 i 48 godzin przy użyciu analizatora XT-2000iV. Klinika weterynaryjna. 2014;43(1):24-35.
Bau-Gaudreault L, Grimes CN. Wpływ czasu i przechowywania na toksyczne lub pseudotoksyczne zmiany w neutrofilach psów. Klinika Weterynaryjna. 2019;48(3):400-405.
Harvey J. Ocena erytrocytów. W: Harvey J. Hematologia weterynaryjna: przewodnik diagnostyczny i atlas kolorów. Elsevier Saunders; 2012:88.

Polecane artykuły:

Barr CA, Gianotti G, Graffeo CE, Drobatz KJ, Silverstein DC. Wpływ pobierania krwi metodą push-pull z cewnika założonego na stałe w porównaniu z bezpośrednim nakłuciem żyły na wartości gazometrii krwi żylnej przed i po podaniu alfaksalonu lub propofolu u psów. J Am Vet Med Assoc. 2017;25(10):1160-1165.
Hanson K, Linklater A. Wprowadzenie centralnego cewnika do pobierania próbek do żyły obwodowej. Streszczenie dla lekarza. 2014;12(12):57-62.